Ағылшыншамен салыстырыңыз: абзацты басыңыз — түпнұсқа терезеде ашылады. Абзац астындағы EN түймесі оны мәтін ішінде көрсетеді.
Мазмұны
Кіріспе
Микроскопияда теріс бояу – диагностикалық микроскопияда жиі қолданылатын, жұқа үлгіні оптикалық көріне алмайтын сұйықтықпен контрастты көрсету әдісі. Бұл техникада фон боялады, ал нақты үлгіге қол тигізілмейді, соның арқасында ол көрінеді. Бұл оң бояудан өзгеше, онда нақты үлгінің өзі боялады.
In microscopy, negative staining is an established method, often used in diagnostic microscopy, for contrasting a thin specimen with an optically opaque fluid. In this technique, the background is stained, leaving the actual specimen untouched, and thus visible. This contrasts with positive staining, in which the actual specimen is stained.
Жарық өрістік микроскопия
Жарық өрісті микроскопия үшін теріс бояу әдетте нигрозин және Үндістан сиясы сияқты қара сия сұйықтығын қолдану арқылы жасалады. Мысалы, шыныға жағылған ылғал бактериялық культурасы сияқты үлгі, теріс бояумен араластырылып, кептіріледі. Микроскоппен қарағанда бактерия жасушалары, және мүмкін олардың споралары, қара фонда ақшыл көрінеді. Теріс бояуды жеткізу үшін су өткізбейтін қарапайым маркер қаламын пайдаланатын балама әдіс әзірленді.
For bright field microscopy, negative staining is typically performed using a black ink fluid such as nigrosin and India ink. The specimen, such as a wet bacterial culture spread on a glass slide, is mixed with the negative stain and allowed to dry. When viewed with the microscope the bacterial cells, and perhaps their spores, appear light against the dark surrounding background. An alternative method has been developed using an ordinary waterproof marking pen to deliver the negative stain.
Трансмиссиялық электронды микроскопия
Трансмиссиялық электронды микроскопияда электрондарға қатысты мөлдірлік атомдық санға, яғни протондар санына байланысты. Кейбір қолайлы теріс бояуларға аммоний молибдаты, уранил ацетаты, уранил форматы, фосфотунгстикалық қышқыл, осмий тетроксиді, осмий феррицианиді және ауроглюкотионат жатады. Бұл бояулар электрондарды күшті шашырату қабілетіне және биологиялық материалға жақсы сіңірілуіне байланысты таңдалған. Теріс бояуға болатын құрылымдар жарық микроскопымен зерттелетін құрылымдардан әлдеқайда кішідірек. Бұл әдіс вирустарды, бактерияларды, бактериялық талшықтарды, биологиялық мембраналық құрылымдарды және электрондарды аз шашырататын ақуыздарды немесе ақуыз жиынтықтарын қарау үшін қолданылады. Кейбір бояулар, мысалы осмий тетроксиді мен осмий феррицианиді, химиялық тұрғыдан өте активті. Күшті тотықтырғыштар ретінде олар липидтермен қанықпаған көміртегі-көміртегі байланыстары арқылы әрекеттесіп, липидтерді бір-бірімен байланыстырады, соның салдарынан биологиялық мембраналарды тіндік үлгілерде бекітеді және бір мезгілде бояйды. Электронды микроскопияда теріс бояуды таңдау өте маңызды болуы мүмкін. Ауруға шалған өсімдіктің жапырақтарынан алынған теріс боялған үлгілерді зерттеудің алғашқы кезеңінде бір бояумен тек шар тәрізді вирустар, ал екіншісімен тек таяқша тәрізді вирустар анықталды. Расталған қорытынды бойынша, бұл өсімдік екі түрлі вирустың бірдей жұқтыруына шалдыққан. Жұқпалы организмдерді жарық және электронды микроскоптарда теріс бояумен зерттеуге қатаң қауіпсіздік шаралары сақталмаса рұқсат етілмейді. Теріс бояу әдетте өте жеңіл дайындау әдісі болып табылады, сондықтан оператордың жұқтыру қаупін арттырмайды.
In the case of transmission electron microscopy, opaqueness to electrons is related to the atomic number, i. e., the number of protons. Some suitable negative stains include ammonium molybdate, uranyl acetate, uranyl formate, phosphotungstic acid, osmium tetroxide, osmium ferricyanide and auroglucothionate. These have been chosen because they scatter electrons strongly and also adsorb to biological matter well. The structures which can be negatively stained are much smaller than those studied with the light microscope. Here, the method is used to view viruses, bacteria, bacterial flagella, biological membrane structures and proteins or protein aggregates, which all have a low electron scattering power. Some stains, such as osmium tetroxide and osmium ferricyanide, are very chemically active. As strong oxidants, they cross link lipids mainly by reacting with unsaturated carbon carbon bonds, and thereby both fix biological membranes in place in tissue samples and simultaneously stain them. The choice of negative stain in electron microscopy can be very important. An early study of plant viruses using negatively stained leaf dips from a diseased plant showed only spherical viruses with one stain and only rod shaped viruses with another. The verified conclusion was that this plant suffered from a mixed infection by two separate viruses. Negative staining at both light microscope and electron microscope level should never be performed with infectious organisms unless stringent safety precautions are followed. Negative staining is usually a very mild preparation method and thus does not reduce the possibility of operator infection.
Басқа қолданбалар
Теріс бояуды қолданатын беріліс электронды микроскопиясы ламелді липосомалар (le), кері сфералық мицеллалар (M) және кері бұрышты HII цилиндрлік (H) фазалар сияқты сулы липидтік жиынтықтарды зерттеу және анықтау үшін де сәтті қолданылды (суретті қараңыз).
Negative staining transmission electron microscopy has also been successfully employed for study and identification of aqueous lipid aggregates like lamellar liposomes (le), inverted spherical micelles (M) and inverted hexagonal HII cylindrical (H) phases (see figure).