Введение
Группа биологических рецепторов
Опиоидные рецепторы — это группа ингибирующих G-белок-связанных рецепторов, для которых опиоиды выступают в качестве лигандов. Эндогенными опиоидами являются динорфины, энкефалины, эндорфины, эндоморфины и ноцицептин. Опиоидные рецепторы примерно на 40% идентичны соматостатиновым рецепторам (SSTR). Опиоидные рецепторы широко распространены в головном мозге, спинном мозге, на периферических нейронах и в пищеварительном тракте.
Открытие
К середине 1960-х годов фармакологические исследования показали, что опиоиды, вероятно, реализуют свое действие посредством специфических рецепторных участков, и что таких участков, скорее всего, несколько. Более ранние исследования указывали на то, что опиаты накапливаются в мозге. Рецепторы впервые были идентифицированы как специфические молекулы с использованием исследований связывания, в ходе которых опиаты, меченные радиоизотопами, обнаруживались, связываясь с гомогенатами мембран мозга. Первое такое исследование было опубликовано в 1971 году с использованием 3H-леворфанола. В 1973 году Кандис Перт и Соломон Х. Снайдер опубликовали первое подробное исследование связывания того, что впоследствии оказалось μ-опиоидным рецептором, используя 3H-налоксон. Это исследование широко признано первым убедительным доказательством существования опиоидного рецептора, хотя вскоре после него были опубликованы еще два исследования.
Очищение
Очистка рецептора дополнительно подтвердила его существование. Первая попытка очистки рецептора включала использование нового опиоидного антагониста под названием хлорналтрексамин, который продемонстрировал способность связываться с опиоидным рецептором. Позже Карузо очистил компонент, выделенный из мембран мозга крысы с помощью детергента, который элюировался вместе со специфически связанным 3H-хлорналтрексамином.
Эволюция
Семейство опиоидных рецепторов (ОР) произошло от двух событий дупликации единого предкового опиоидного рецептора на ранних этапах эволюции позвоночных. Филогенетический анализ демонстрирует, что семейство опиоидных рецепторов уже существовало в момент появления челюстных позвоночных более 450 миллионов лет назад. У человека этот паралогон, возникший в результате двойной тетраплоидизации, привел к локализации генов рецепторов на хромосомах 1, 6, 8 и 20. События тетраплоидизации часто приводят к потере одного или нескольких дублированных генов, но в данном случае почти все виды сохраняют все четыре опиоидных рецептора, что свидетельствует о биологической значимости этих систем. Стефано проследил совместную эволюцию ОР и иммунной системы, лежащую в основе того факта, что эти рецепторы помогали ранним животным выживать при боли и воспалительном шоке в агрессивных условиях. Семейства рецепторов дельта, каппа и мю демонстрируют 55–58% идентичности друг с другом и 48–49% гомологии с ноцицептиновым рецептором. В совокупности это указывает на то, что ген NOP-рецептора, OPRL1, имеет такое же эволюционное происхождение, но более высокую скорость мутаций, чем другие гены рецепторов. Хотя семейства опиоидных рецепторов имеют много общего, их структурные различия приводят к функциональным различиям. Таким образом, мю-опиоидные рецепторы индуцируют расслабление, доверие, удовлетворение и анальгезию. Эта система также может способствовать установлению стабильных, эмоционально привязанных отношений. Эксперименты на молодых морских свинках показали, что социальная привязанность опосредована опиоидной системой. Эволюционная роль опиоидной сигнализации в этих видах поведения была подтверждена на собаках, цыплятах и крысах. Опиоидные рецепторы также играют роль в репродуктивном поведении. Однако мю-опиоидные рецепторы контролируют не только социальное поведение, но и вызывают чувство расслабления в самых разных ситуациях. Каппа- и дельта-опиоидные рецепторы могут быть менее связаны с расслаблением и анальгезией, поскольку каппа-опиоидный рецептор подавляет активацию мю-опиоидного рецептора, а дельта-опиоидный рецептор по-разному взаимодействует с агонистами и антагонистами. Каппа-опиоидные рецепторы участвуют в перцептивной мобилизации при хронической тревоге, в то время как дельта-опиоидные рецепторы индуцируют инициацию действий, импульсивность и поведенческую мобилизацию. Эти различия заставили некоторых исследователей предположить, что регуляция вверх или вниз в трех семьях опиоидных рецепторов лежит в основе различной эмоциональной предрасположенности, наблюдаемой при психических расстройствах. Специфические для человека когнитивные особенности, модулируемые опиоидами, обусловлены не различиями в кодировании рецепторов или лигандов, которые имеют 99% сходства с приматами, а регуляторными изменениями в уровнях экспрессии.
Номенклатура
Рецепторы были названы по первой букве первого лиганда, который был обнаружен, связывающегося с ними. Морфин был первым химическим веществом, показавшим связывание с "мю"-рецепторами. Первая буква названия препарата морфин – m, которая отображается соответствующей греческой буквой μ. Аналогичным образом, препарат кетоциклазоцин впервые продемонстрировал связывание с "κ" (каппа)-рецепторами, а "δ" (дельта)-рецептор был назван в честь ткани придатка яичка мыши, в которой рецептор был впервые охарактеризован. Позднее был идентифицирован и клонирован дополнительный опиоидный рецептор на основе гомологии с кДНК. Этот рецептор известен как ноцицептин-рецептор или ORL1 (опиоидоподобный рецептор 1). Типы опиоидных рецепторов почти на 70% идентичны, при этом различия локализованы в N- и C-концевых областях. Мю-рецептор, вероятно, является наиболее важным. Считается, что G-белок связывается с третьим внутриклеточным циклом всех опиоидных рецепторов. У мышей и у людей гены различных подтипов рецепторов расположены на разных хромосомах. В тканях человека были идентифицированы отдельные подтипы опиоидных рецепторов. До настоящего времени исследования не выявили генетических доказательств существования подтипов, и предполагается, что они возникают в результате посттрансляционной модификации клонированных типов рецепторов. Подкомитет IUPHAR рекомендовал использовать следующую терминологию для трех классических (μ, δ, κ) рецепторов и неклассического (ноцицептин) рецептора: MOP ("Mu OPiate receptor"), DOP, KOP и NOP соответственно.
Дополнительные рецепторы
Сигма (σ) рецепторы когда-то считались опиоидными рецепторами, поскольку антитуссивное действие многих опиоидных препаратов опосредовалось через σ рецепторы, а первые селективные агонисты σ были производными опиоидов (например, аллильнорметазоцин). Однако было установлено, что эндогенные опиоидные пептиды не активируют σ рецепторы, и они значительно отличаются от других опиоидных рецепторов как по функции, так и по генной последовательности, поэтому в настоящее время их обычно не классифицируют как опиоидные рецепторы. Существование дополнительных опиоидных рецепторов (или подтипов рецепторов) также предполагалось на основании фармакологических данных о действиях, вызываемых эндогенными опиоидными пептидами, но не опосредованных ни одним из четырех известных подтипов опиоидных рецепторов. Основания для предположения о существовании подтипов рецепторов или дополнительных рецепторов, отличных от классических опиоидных рецепторов (μ, δ, κ), были ограничены, поскольку идентифицированы только три гена для трех основных рецепторов. Единственным из этих дополнительных рецепторов, который был окончательно идентифицирован, является дзета (ζ) опиоидный рецептор, который, как было показано, является модулятором фактора клеточного роста, а мет-энкeфалин – его эндогенным лигандом. В настоящее время этот рецептор чаще всего называют рецептором опиоидного фактора роста (OGFr).
Эпсилон (ε) опиоидный рецептор
Другим постулируемым опиоидным рецептором является ε-опиоидный рецептор. О существовании этого рецептора предположили после того, как было показано, что эндогенный опиоидный пептид бета-эндорфин оказывает дополнительные эффекты, которые, по-видимому, не опосредованы ни одним из известных опиоидных рецепторов. Активация этого рецептора вызывает выраженную анальгезию и высвобождение мет-энкeфалина; ряд широко используемых опиоидных агонистов, таких как μ-агонист эторфин и κ-агонист бремазоцин, продемонстрировали агонистическую активность в отношении этого эффекта (даже в присутствии антагонистов к их более известным мишеням), в то время как бупренорфин выступает в роли ε-антагониста. В настоящее время доступны несколько селективных агонистов и антагонистов для предполагаемого ε-рецептора; однако попытки обнаружить ген, кодирующий этот рецептор, не увенчались успехом, а эффекты, опосредованные ε-рецептором, отсутствовали у мышей с "тройным нокаутом" по генам μ/δ/κ, что позволяет предположить, что ε-рецептор, скорее всего, является либо сплайс-вариантом, полученным в результате альтернативной посттрансляционной модификации, либо гетеродимером, образованным в результате гибридизации двух или более известных опиоидных рецепторов.
Механизм активации
Опиоидные рецепторы являются типом G-белок-связанных рецепторов (GPCR). Эти рецепторы распределены по всей центральной нервной системе и в периферических тканях нервного и не нервного происхождения. Они также локализованы в высоких концентрациях в сером веществе вокруг водопровода, голубом ядре и ростральной вентромедиальной части продолговатого мозга. Рецепторы состоят из внеклеточного N-концевого аминокислотного фрагмента, семи трансмембранных спиральных петель, трех внеклеточных петель, трех внутриклеточных петель и внутриклеточного карбоксильного C-конца. Три внеклеточных петли GPCR обеспечивают пространство, где сигнальные молекулы могут присоединяться для генерации ответа. Гетеротримерный G-белок содержит три различных субъединицы, включая альфа (α), бета (β) и гамма (γ) субъединицы. Гамма и бета субъединицы постоянно связаны друг с другом, образуя единую Gβγ субъединицу. Гетеротримерные G-белки действуют как «молекулярные переключатели», играющие ключевую роль в передаче сигнала, поскольку они передают информацию от активированных рецепторов к соответствующим эффекторным белкам. Все α субъединицы G-белка содержат пальмитат – 16-углеродную насыщенную жирную кислоту, присоединенную вблизи N-конца посредством нестабильной, обратимой тиоэфирной связи к аминокислоте цистеину. Именно эта пальмитоилирование позволяет G-белку взаимодействовать с мембранными фосфолипидами благодаря гидрофобной природе α субъединиц. Гамма субъединица также модифицирована липидами и может прикрепляться к плазматической мембране. Эти свойства двух субъединиц позволяют G-белку опиоидного рецептора постоянно взаимодействовать с мембраной посредством липидных якорей. Когда агонистический лиганд связывается с опиоидным рецептором, происходит конформационное изменение, и молекула GDP высвобождается из α субъединицы G. Этот механизм сложен и является основным этапом пути передачи сигнала. Когда молекула GDP связана, α субъединица G находится в неактивном состоянии, а карман связывания нуклеотидов закрыт внутри белкового комплекса. Однако при связывании лиганда рецептор переключается в активную конформацию, что обусловлено межмолекулярной перестройкой между трансмембранными спиралями. Активация рецептора высвобождает «ионный замок», удерживающий вместе цитоплазматические стороны трансмембранных спиралей три и шесть, заставляя их вращаться. Это конформационное изменение обнажает внутриклеточные домены рецептора на цитозольной стороне, что, в свою очередь, приводит к активации G-белка. Когда молекула GDP диссоциирует от α субъединицы G, молекула GTP связывается со свободным карманом связывания нуклеотидов, и G-белок становится активным. Образуется комплекс Gα(GTP), который имеет более низкий аффинность к Gβγ субъединице, чем комплекс Gα(GDP), что приводит к отделению α субъединицы G от Gβγ субъединицы, образуя две части G-белка. Субъединицы теперь свободны для взаимодействия с эффекторными белками; однако они все еще прикреплены к плазматической мембране липидными якорями. После связывания активные субъединицы G-белка диффундируют в мембране и действуют на различные внутриклеточные эффекторные пути. Это включает в себя ингибирование активности нейронной аденилатциклазы, а также увеличение гиперполяризации мембраны. Когда стимулируется ферментный комплекс аденилатциклазы, он приводит к образованию циклического аденозин-3',5'-монофосфата (cAMP) из аденозин-5'-трифосфата (ATP). cAMP действует как вторичный посредник, перемещаясь из плазматической мембраны в клетку и передавая сигнал. cAMP связывается и активирует cAMP-зависимую протеинкиназу A (PKA), которая находится внутриклеточно в нейроне. PKA состоит из голофермента – соединения, которое становится активным в результате объединения фермента с коферментом. Фермент PKA также содержит две каталитические субъединицы PKS Cα и регуляторный димер субъединицы PKA R. Голофермент PKA неактивен в нормальных условиях, однако, когда молекулы cAMP, образовавшиеся ранее в механизме передачи сигнала, объединяются с ферментом, PKA претерпевает конформационное изменение. Это активирует его, давая ему возможность катализировать фосфорилирование субстрата. CREB (белок, связывающий элемент ответа на cAMP) принадлежит к семейству факторов транскрипции и расположен в ядре нейрона. Когда PKA активируется, он фосфорилирует белок CREB (добавляет высокоэнергетическую фосфатную группу) и активирует его. Белок CREB связывается с элементами ответа на cAMP (CRE) и может увеличивать или уменьшать транскрипцию определенных генов. Описанный выше путь передачи сигнала cAMP/PKA/CREB имеет решающее значение для формирования памяти и модуляции боли. Он также важен для индукции и поддержания долговременной потенциации, феномена, лежащего в основе синаптической пластичности – способности синапсов укрепляться или ослабевать с течением времени. Вольтаж-зависимый кальциевый канал (VDCC) играет ключевую роль в деполяризации нейронов и играет важную роль в усилении высвобождения нейротрансмиттеров. Когда агонисты связываются с опиоидными рецепторами, G-белки активируются и диссоциируют на свои составные субъединицы Gα и Gβγ. Субъединица Gβγ связывается с внутриклеточной петлей между двумя трансмембранными спиралями VDCC. Когда субъединица связывается с вольтаж-зависимым кальциевым каналом, она производит вольтаж-зависимый блок, который ингибирует канал, предотвращая поток ионов кальция в нейрон. В клеточную мембрану также встроен G-белок-связанный внутрь-исправляющий калиевый канал. Когда молекула Gβγ или Gα(GTP) связывается с C-концом калиевого канала, он становится активным, и ионы калия выкачиваются из нейрона. Активация калиевого канала и последующая деактивация кальциевого канала вызывают гиперполяризацию мембраны. Это изменение мембранного потенциала в сторону более отрицательных значений. Снижение концентрации ионов кальция приводит к снижению высвобождения нейротрансмиттеров, поскольку кальций необходим для этого события. Это означает, что нейротрансмиттеры, такие как глутамат и субстанция P, не могут быть высвобождены из пресинаптического окончания нейронов. Эти нейротрансмиттеры жизненно важны для передачи боли, поэтому активация опиоидных рецепторов снижает высвобождение этих веществ, тем самым создавая сильный обезболивающий эффект.
Патология
Некоторые формы мутаций в δ-опиоидных рецепторах привели к конститутивной активации рецепторов.