Введение
Вид бактерии Caulobacter crescentus – это грамотрицательная олиготрофная бактерия, широко распространенная в пресноводных озерах и ручьях. Более корректным названием для этого таксона является Caulobacter vibrioides (Henrici и Johnson, 1935). Использование этого организма в качестве модельного началось с работ биолога развития Люси Шапиро.
Caulobacter crescentus is a Gram negative, oligotrophic bacterium widely distributed in fresh water lakes and streams. The taxon is more properly known as Caulobacter vibrioides (Henrici and Johnson 1935). Its use as a model originated with developmental biologist Lucy Shapiro.
Штаммы
В лаборатории исследователи различают штамм C. crescentus CB15 (штамм, первоначально выделенный из пресноводного озера) и NA1000 (основной экспериментальный штамм). В штамме NA1000, полученном из CB15 в 1970-х годах, клетки с ножками и клетки, готовящиеся к делению, можно физически отделить в лаборатории от новых клеток-роя, в то время как типы клеток штамма CB15 физически разделить не удается. Изолированные клетки-рои можно затем выращивать как синхронизированную клеточную культуру. Детальное изучение молекулярного развития этих клеток по мере прохождения клеточного цикла позволило исследователям глубоко понять регуляцию клеточного цикла Caulobacter. Благодаря этой возможности физической синхронизации штамм NA1000 стал преобладающим экспериментальным штаммом Caulobacter во всем мире. Дополнительные фенотипические различия между двумя штаммами впоследствии накапливались из-за селективного давления на штамм NA1000 в лабораторных условиях. Генетическая основа фенотипических различий между двумя штаммами заключается в кодирующих, регуляторных и полиморфизмах вставки/удаления в пяти хромосомных локусах.
Генемика
Геном Caulobacter CB15 содержит 4 016 942 пары оснований в одной кольцевой хромосоме, кодирующей 3 767 генов. Геном включает в себя несколько кластеров генов, кодирующих белки, необходимые для выживания в условиях недостатка питательных веществ. Среди них гены, участвующие в хемотаксисе, функционировании внешних мембранных каналов, деградации ароматических соединений и расщеплении углеродных источников растительного происхождения, а также множество сигма-факторов экстрацитоплазматической функции, обеспечивающих организму способность реагировать на широкий спектр изменений в окружающей среде. В 2010 году был секвенирован штамм Caulobacter NA1000, и все различия между ним и штаммом CB15 "дикого типа" были установлены.
Роль стадии роя клеток
Стадия клеток с ножкой Caulobacter обеспечивает преимущество в выживаемости, прикрепляя клетки к поверхностям для формирования биопленок и/или использования источников питательных веществ. Как правило, бактериальные виды, которые делятся быстрее, наиболее эффективно используют ресурсы и занимают экологические ниши. Однако у Caulobacter есть стадия подвижной клетки, что приводит к более медленному росту популяции. Считается, что подвижная клетка обеспечивает расселение клеток, позволяя организму постоянно искать новые среды обитания. Это может быть особенно полезно в условиях сильного дефицита питательных веществ, когда скудные доступные ресурсы могут быть быстро истощены. Многие, возможно, большинство, дочерних клеток подвижного типа не найдут подходящую среду, но обязательная стадия расселения должна повышать репродуктивную приспособленность вида в целом.
Клеточный цикл
Система регуляции клеточного цикла Caulobacter контролирует множество модульных подсистем, которые организуют последовательность роста и размножения клеток. Система управления, построенная на основе биохимических и генетических логических схем, организует время запуска каждой из этих подсистем. Центральным элементом регуляции клеточного цикла является циклическая генетическая цепь – «двигатель» клеточного цикла, основанный на последовательных взаимодействиях пяти ключевых регуляторных белков: DnaA, GcrA, CtrA, SciP и CcrM, роли которых были установлены в лабораториях Люси Шапиро и Харли МакАдамса. Эти пять белков непосредственно контролируют время экспрессии более 200 генов. Пять ключевых регуляторных белков синтезируются, а затем последовательно удаляются из клетки в течение клеточного цикла. Для нормального функционирования этого «двигателя» клеточного цикла также необходимы несколько дополнительных путей клеточной сигнализации. Основная роль этих путей – обеспечение надежной продукции и удаления белка CtrA из клетки в строго определенные моменты клеточного цикла. Важная особенность клеточного цикла Caulobacter заключается в том, что хромосома реплицируется один раз и только один раз за цикл. Это отличается от клеточного цикла E. coli, где могут одновременно протекать перекрывающиеся раунды репликации хромосом. Противоположные функции белков DnaA и CtrA Caulobacter имеют решающее значение для жесткого контроля репликации хромосом Caulobacter. Белок DnaA действует в начале репликации, инициируя репликацию хромосомы. Белок CtrA, напротив, блокирует начало репликации, поэтому его необходимо удалить из клетки до начала репликации хромосом. Множество дополнительных регуляторных путей, являющихся неотъемлемой частью регуляции клеточного цикла и включающих как фосфосигналинг, так и регулируемый контроль протеолиза, обеспечивают присутствие белков DnaA и CtrA в клетке именно тогда, когда это необходимо. Каждый процесс, активируемый белками «двигателя» клеточного цикла, включает в себя каскад множества реакций. Самым длинным каскадом подсистем является репликация ДНК. В клетках Caulobacter репликация хромосомы включает около 2 миллионов реакций синтеза ДНК на каждую руку хромосомы в течение 40–80 минут, в зависимости от условий. Хотя среднее время для каждой отдельной реакции синтеза можно оценить на основе наблюдаемого среднего общего времени репликации хромосомы, фактическое время реакции для каждой реакции значительно варьируется вокруг среднего значения. Это приводит к существенной и неизбежной вариации времени завершения репликации хромосомы от клетки к клетке. Аналогичная случайная вариация наблюдается и в скорости протекания каскадов реакций всех остальных подсистем. В результате время завершения клеточного цикла значительно варьируется среди клеток в популяции, даже если все они растут в идентичных условиях окружающей среды. Регуляция клеточного цикла включает сигналы обратной связи, которые регулируют скорость прогрессирования «двигателя» клеточного цикла, чтобы она соответствовала прогрессу событий на уровне регуляторных подсистем в каждой конкретной клетке. Такая организация системы управления, с контроллером («двигателем» клеточного цикла), управляющим сложной системой, с модуляцией сигналами обратной связи от контролируемой системы, создает систему управления замкнутым циклом. Скорость прогрессирования клеточного цикла дополнительно регулируется сигналами от клеточных сенсоров, которые контролируют условия окружающей среды (например, уровень питательных веществ и кислорода) или внутреннее состояние клетки (например, наличие повреждений ДНК).
Эволюционная консервация системы контроля клеточного цикла
Контрольная схема, направляющая и регулирующая ход клеточного цикла Caulobacter, включает в себя всю клетку, функционирующую как единая интегрированная система. Эта схема отслеживает состояние окружающей среды и внутреннее состояние клетки, включая её топологию, координируя активацию подсистем клеточного цикла и асимметричное деление клеток Caulobacter crescentus. Белки системы контроля клеточного цикла Caulobacter и её внутренней организации широко консервативны у многих видов альфапротеобактерий, однако функциональность регуляторного аппарата и его периферические связи с другими клеточными подсистемами значительно различаются от вида к виду. Система управления клеточным циклом Caulobacter была тонко оптимизирована эволюционным отбором как целостная система для устойчивой работы в условиях внутреннего стохастического шума и неопределенности окружающей среды. Система управления бактериальной клеткой имеет иерархическую организацию. Подсистема сигнализации и управления взаимодействует с окружающей средой посредством сенсорных модулей, преимущественно расположенных на поверхности клетки. Логика генетической сети реагирует на сигналы, поступающие из окружающей среды и от внутренних датчиков состояния клетки, адаптируя клетку к текущим условиям. Основная функция верхнего уровня управления – обеспечение последовательного выполнения операций, связанных с клеточным циклом. У Caulobacter это достигается за счет генетической регуляторной цепи, состоящей из пяти главных регуляторов и ассоциированной с ними сети фосфорилирования. Сеть фосфосигнализации отслеживает стадию клеточного цикла и играет ключевую роль в осуществлении асимметричного деления клеток. Система контроля клеточного цикла управляет временем и местом инициации репликации хромосом и цитокинеза, а также развитием полярных органелл. В основе всех этих процессов лежат механизмы производства белков и структурных компонентов, а также выработки энергии. Метаболические и катаболические подсистемы, обеспечивающие жизнедеятельность клетки, поставляют энергию и молекулярное сырье для синтеза белков, построения клеточной стенки и других клеточных процессов. Функции поддержания жизнедеятельности двунаправленно связаны с системой контроля клеточного цикла. Однако они могут адаптироваться, в определенной степени независимо от логики управления клеточным циклом, к изменениям состава и концентрации доступных источников питательных веществ. Белки системы контроля клеточного цикла Caulobacter широко консервативны у альфапротеобактерий, но конечная функция этой регуляторной системы значительно варьируется у разных видов. Эти эволюционные изменения отражают огромные различия между отдельными видами в стратегиях выживания и экологических нишах. Например, Agrobacterium tumefaciens является патогеном растений, Brucella abortus – патогеном животных, а Sinorhizobium meliloti – почвенной бактерией, проникающей в корневые клубеньки растений и становящейся симбионтом, фиксирующим азот, однако большинство белков системы контроля клеточного цикла Caulobacter также обнаруживаются у этих видов. Специфическое взаимодействие между белковыми компонентами сети управления клеточным циклом и нисходящими звеньями цепи различается от вида к виду. Характерно, что внутренняя функциональность сетевых схем сохраняется, но связь на "периферии" регуляторного аппарата с белками, контролирующими специфические клеточные функции, значительно различается у разных видов.
Эволюция позиционирования стеблей в кладе Caulobacter
Caulobacter crescentus относится к группе бактерий, обладающих стеблевидной структурой – трубчатым выростом от тела клетки. Однако положение стебля не всегда сохраняется на полюсе тела клетки у различных близкородственных видов. В частности, исследования показали, что в близкородственном роде Asticcacaulis может меняться не только положение, но и количество стеблей. SpmX, полярно локализованный белок в Caulobacter crescentus, способен изменять позиционирование стеблей у этих видов Asticcacaulis. На основании исследований экспериментальной эволюции у C. crescentus, Ackermann et al.
Регулирование полярности ячейки
В C. crescentus клеточная полярность отчетливо видна в сборке полярных органелл и поляризации плоскости деления, что приводит к образованию дочерних клеток со стебельками, которые длиннее дочерних клеток с жгутиками. Формирование новых полюсов клеток при делении подразумевает, что клеточная полярность должна быть восстановлена в дочерних клетках со стебельками и изменена на противоположную в дочерних клетках с жгутиками. Жизненный цикл C. crescentus регулируется регуляторами, такими как TipN – белок клеточного цикла. Данные Йельского университета убедительно подтверждают модель, в которой TipN регулирует ориентацию оси полярности, предоставляя позиционный сигнал из предыдущего клеточного цикла. В этой модели TipN определяет место последнего деления, идентифицируя новый полюс. Клетка использует эту позиционную информацию как источник внутриклеточной асимметрии для установления и поддержания ориентации оси полярности, что критически важно для полярного морфогенеза и деления. Набор TipN к формирующимся полюсам в конце цикла деления переопределяет идентичность полюсов и восстанавливает правильную полярность в обеих будущих дочерних клетках (с инверсией полярности в клетке с жгутиками). TipN содержит два трансмембранных домена в N-концевом регионе и большой C-концевой домен, образующий спираль. Гомологи TipN обнаружены и у других альфа-протеобактерий. После деления TipN локализуется к новому полюсу в обеих дочерних клетках и затем перемещается к месту деления клетки в поздней предделительной клетке. Таким образом, обе дочерние клетки имеют TipN на новом полюсе после деления. Мутанты, лишенные TipN, допускают серьезные ошибки в развитии. Вместо образования единственного жгутика на правильном полюсе клетки, клетка формирует множественные жгутики в различных местах, в том числе и на стебельке.