Введение
Класс ферментов, расщепляющих нуклеиновые кислоты
В биохимии нуклеаза (также устаревшие названия – нуклеодеполимераза или полинуклеотидаза) – это фермент, способный расщеплять фосфодиэфирные связи между нуклеотидами нуклеиновых кислот. Нуклеазы вызывают разрывы как в одноцепочечных, так и в двуцепочечных молекулах-мишенях. В живых организмах они являются ключевым механизмом для многих аспектов репарации ДНК. Дефекты в определенных нуклеазах могут приводить к генетической нестабильности или иммунодефициту. Нуклеазы также широко используются в молекулярном клонировании. Существует две основные классификации, основанные на месте действия. Экзонуклеазы расщепляют нуклеиновые кислоты от концов. Эндонуклеазы действуют на участки в середине молекулы-мишени. Они далее подразделяются на дезоксирибонуклеазы и рибонуклеазы. Первые действуют на ДНК, вторые – на РНК. Один из этих ферментов добавляет метильную группу к ДНК, образуя метилированную ДНК, в то время как другой расщепляет неметилированную ДНК в различных местах вдоль молекулы. Первый тип фермента был назван "метилазой", а второй – "рестрикционной нуклеазой". Эти ферментативные инструменты были важны для ученых, разрабатывавших методы "вырезания и вставки" молекул ДНК. Тогда требовался инструмент, который разрезал бы ДНК в специфических местах, а не случайным образом по всей длине молекулы, чтобы ученые могли разрезать молекулы ДНК предсказуемым и воспроизводимым образом. Важным достижением стало то, что Х.О. Смит, К.У. Уилкокс и Т.Дж. Келли, работавшие в Университете Джона Хопкинса в 1968 году, изолировали и охарактеризовали первую рестрикционную нуклеазу, функционирование которой зависело от определенной последовательности нуклеотидов ДНК. Работая с бактериями *Haemophilus influenzae*, эта группа выделила фермент, названный HindII, который всегда разрезал молекулы ДНК в определенной точке внутри специфической последовательности из шести пар оснований. Они обнаружили, что фермент HindII всегда разрезает точно в центре этой последовательности (между 3-й и 4-й парой оснований).
Система цифровой классификации
Большинство нуклеаз классифицируются Комиссией по ферментам "Комитета по номенклатуре Международного союза биохимии и молекулярной биологии" как гидролазы (EC номер 3). Нуклеазы, подобно фосфодиэстеразам, липазам и фосфатазам, относятся к эстеразам (EC номер 3.1) – подгруппе гидролаз. Эстеразы, к которым принадлежат нуклеазы, классифицируются под EC номерами 3.1.11 и 3.1.31.
Структура
Первичная структура нуклеаз в большинстве случаев слабо консервативна и минимально консервативна в активных центрах, поверхности которых преимущественно состоят из кислых и основных аминокислотных остатков. Нуклеазы можно классифицировать по семействам структурной организации.
Опознание места
Нуклеаза должна ассоциироваться с нуклеиновой кислотой, прежде чем она сможет расщепить молекулу. Это подразумевает определенный уровень распознавания. Нуклеазы используют как неспецифические, так и специфические взаимодействия в своих механизмах распознавания и связывания. Оба механизма играют важную роль в живых организмах, особенно в репарации ДНК. Неспецифические эндонуклеазы, участвующие в репарации ДНК, могут сканировать ДНК в поисках целевых последовательностей или повреждений. Такая нуклеаза диффундирует вдоль ДНК, пока не встретит цель, после чего остатки ее активного центра взаимодействуют с химическими группами ДНК. В случае эндонуклеаз, таких как EcoRV, BamHI и PvuII, это неспецифическое связывание включает электростатические взаимодействия между небольшой площадью поверхности белка и ДНК. Эта слабая ассоциация не деформирует общую структуру ДНК, сохраняя ее в B-форме.
Остановился форк репликации
Многие формы повреждений ДНК останавливают продвижение репликационной вилки, заставляя ДНК-полимеразы и связанный с ними аппарат покидать вилку. Затем вилка должна быть обработана белками, специфичными для репликационных вилок. Наиболее важным из них является MUS81. Делеции гена MUS81 вызывают чувствительность дрожжей к УФ-излучению или метилирующим повреждениям, а также дефекты мейоза.
Ремонт несоответствия
Ремонт неспаривания ДНК в любом организме осуществляется набором эндонуклеаз, специфичных к неспариваниям. У прокариот эту роль в основном выполняют MutSLH и белки, связанные с репарацией очень коротких участков (VSP-репарация). Система MutSLH (состоящая из MutS, MutL и MutH) исправляет точечные мутации и небольшие инсерции/делеции. MutS распознает и связывается с неспариваниями, после чего рекрутирует MutL и MutH. MutL опосредует взаимодействие между MutS и MutH и усиливает эндонуклеазную активность последнего. MutH распознает гемиметилированные участки 5'-GATC-3' и осуществляет разрез рядом с G неметилированной цепи (более недавно синтезированной цепи). VSP-репарация инициируется эндонуклеазой Vsr. Она исправляет специфическое несовпадение T/G, вызванное спонтанным деаминированием метилированных цитозинов в тимины. Vsr распознает последовательность 5'-CTWGG-3', где она осуществляет надрез в цепи ДНК на 5'-стороне от неспаренного тимина (подчеркнуто в предыдущей последовательности). Затем одна из экзонуклеаз – RecJ, ExoVII или ExoI – деградирует участок, после чего ДНК-полимераза ресинтезирует разрыв в цепи. V(D)J-рекомбинация включает в себя раскрытие шпильковых структур, связанных с двунитевыми разрывами, и последующее соединение обоих концов. Комплекс Artemis/DNA-PKcs участвует в этой реакции. Хотя Artemis проявляет 5'→3'-экзонуклеазную активность в одиночку, ее комплексообразование с DNA-PKcs позволяет осуществлять эндонуклеазную обработку шпильковых структур. Дефекты любого из этих белков приводят к тяжелому иммунодефициту. Гомологичная рекомбинация, с другой стороны, включает в себя два гомологичных дуплекса ДНК, соединенных D-петлями или соединениями Холлидея. У бактерий эндонуклеазы, такие как RuvC, разрешают соединения Холлидея на две отдельные двунитевые ДНК, осуществляя разрез в двух симметричных точках вблизи центра соединения. У эукариот FEN1, XPF-ERCC1 и MUS81 расщепляют D-петли, а Cce1/Ydc2 обрабатывают соединения Холлидея в митохондриях.
where it nicks the DNA strand on the 5' side of the mismatched thymine (underlined in the previous sequence). One of the exonucleases RecJ, ExoVII, or ExoI then degrades the site before DNA polymerase resynthesizes the gap in the strand. V(D)J recombination involves opening stem loops structures associated with double strand breaks and subsequently joining both ends. The Artemis DNAPKcs complex participates in this reaction. Although Artemis exhibits 5' → 3' ssDNA exonuclease activity when alone, its complexing with DNA PKcs allows for endonucleasic processing of the stem loops. Defects of either protein confers severe immunodeficiency. Homologous recombination, on the other hand, involves two homologous DNA duplexes connected by D loops or Holliday junctions. In bacteria, endonucleases like RuvC resolve Holliday junctions into two separate dsDNAs by cleaving the junctions at two symmetrical sites near the junction centre. In eukaryotes, FEN1, XPF ERCC1, and MUS81 cleave the D loops, and Cce1/Ydc2 processes Holliday junctions in mitochondria.
Меганкулезы
Частота, с которой конкретная нуклеаза разрезает данную молекулу ДНК, зависит от сложности ДНК и длины последовательности распознавания нуклеазы. Из-за статистической вероятности случайного появления определенной последовательности оснований, более длинная последовательность распознавания приводит к менее частому расщеплению. Например, можно предположить, что последовательность из четырех оснований (соответствующая сайту распознавания гипотетической нуклеазы) будет встречаться в среднем каждые 256 пар оснований (поскольку 4⁴ = 256), а последовательность из шести оснований – в среднем раз в 4096 пар оснований (4⁶ = 4096). Уникальным семейством нуклеаз являются мегануклеазы, которые характеризуются более длинными и, следовательно, менее распространенными последовательностями распознавания, состоящими из 12–40 пар оснований. Эти нуклеазы особенно полезны в генетической и геномной инженерии сложных организмов, таких как растения и млекопитающие, где большие геномы (содержащие миллиарды пар оснований) могут приводить к частому и нежелательному специфическому расщеплению при использовании традиционных нуклеаз.