Сравнивайте с английским: нажмите на абзац — оригинал откроется в окне. Кнопка EN под абзацем показывает его прямо в тексте.
Содержание
Введение
Рибулоза 1,5-бисфосфат (RuBP) — это органическое вещество, участвующее в фотосинтезе, в частности, как основной акцептор CO2 у растений. Это бесцветный анион, двойной фосфатный эфир кетопентозы (сахар, содержащий кетон и пять атомов углерода), называемый рибулозой. Соли RuBP могут быть выделены, но его важнейшая биологическая функция реализуется в растворе. RuBP встречается не только у растений, но и во всех доменах жизни, включая археи, бактерии и эукариоты.
Ribulose 1,5 bisphosphate (RuBP) is an organic substance that is involved in photosynthesis, notably as the principal |CO2 acceptor in plants. It is a colourless anion, a double phosphate ester of the ketopentose (ketone containing sugar with five carbon atoms) called ribulose. Salts of RuBP can be isolated, but its crucial biological function happens in solution. RuBP occurs not only in plants but in all domains of life, including Archaea, Bacteria, and Eukarya.
История
RuBP был первоначально обнаружен Эндрю Бенсоном в 1951 году, работая в лаборатории Мелвина Кальвина в Калифорнийском университете в Беркли. Кальвин, отсутствовавший в лаборатории во время открытия и не указанный в качестве соавтора, вызвал споры, убрав полное название молекулы из названия первоначальной статьи, идентифицировав её исключительно как "рибулоза". В то время молекула была известна как рибулозодифосфат (RDP или RuDP), но приставка "di" была изменена на "bis", чтобы подчеркнуть, что две фосфатные группы не связаны непосредственно друг с другом.
RuBP was originally discovered by Andrew Benson in 1951 while working in the lab of Melvin Calvin at UC Berkeley. Calvin, who had been away from the lab at the time of discovery and was not listed as a co author, controversially removed the full molecule name from the title of the initial paper, identifying it solely as "ribulose". At the time, the molecule was known as ribulose diphosphate (RDP or RuDP) but the prefix di was changed to bis to emphasize the nonadjacency of the two phosphate groups.
Роль в фотосинтезе и цикле Кальвина-Бенсона
Энзим рибулоза-1,5-бисфосфаткарбоксилаза/оксигеназа (рубиско) катализирует реакцию между RuBP и углекислым газом. Продукт реакции – высоконестабильное шестиуглеродное промежуточное соединение, известное как 3-кето-2-карбоксиарабинитол-1,5-бисфосфат, или 2'-карбокси-3-кето-D-арабинитол-1,5-бисфосфат (CKABP). Это шестиуглеродное β-кетокислотное промежуточное соединение гидратируется с образованием другого шестиуглеродного промежуточного соединения в форме гем-диола. Затем это промежуточное соединение расщепляется на две молекулы 3-фосфоглицерата (3-ФГА), который используется во множестве метаболических путей и превращается в глюкозу. В цикле Кальвина-Бенсона RuBP является продуктом фосфорилирования рибулозо-5-фосфата (получаемого из глицеральдегид-3-фосфата) АТФ.
The enzyme ribulose 1,5 bisphosphate carboxylase oxygenase (rubisco) catalyzes the reaction between RuBP and carbon dioxide. The product is the highly unstable six carbon intermediate known as 3 keto 2 carboxyarabinitol 1,5 bisphosphate, or 2' carboxy 3 keto D arabinitol 1,5 bisphosphate (CKABP). This six carbon β ketoacid intermediate hydrates into another six carbon intermediate in the form of a gem diol. This intermediate then cleaves into two molecules of 3 phosphoglycerate (3 PGA) which is used in a number of metabolic pathways and is converted into glucose. In the Calvin Benson cycle, RuBP is a product of the phosphorylation of ribulose 5 phosphate (produced by glyceraldehyde 3 phosphate) by ATP.
Взаимодействие с рубиско
RuBP действует как ингибитор фермента рубиско, который регулирует общую активность фиксации углерода. Когда RuBP связывается с активным центром рубиско, способность к активации посредством карбамилирования с CO2 и Mg(2+) блокируется. Функциональность рубискоактивазы заключается в удалении RuBP и других ингибирующих связанных молекул для восстановления возможности карбамилирования в активном центре. Во время фотореспирации RuBP соединяется с O2, образуя 3-фосфоглицерат (3-ФГ). Как и цикл Кальвина-Бенсона, фотореспираторный путь характеризуется своей ферментативной неэффективностью. В растениях C4 скорость фотореспирации снижается благодаря усиленной карбоксиляции RuBP и уменьшению оксигенации рубиско, что связано с повышенной концентрацией CO2 в обкладке пучка.
RuBP acts as an enzyme inhibitor for the enzyme rubisco, which regulates the net activity of carbon fixation. When RuBP is bound to an active site of rubisco, the ability to activate via carbamylation with |CO2 and |Mg(2+) is blocked. The functionality of rubisco activase involves removing RuBP and other inhibitory bonded molecules to re enable carbamylation on the active site. During photorespiration RuBP combines with to become 3 PGA and Like the Calvin Benson Cycle, the photorespiratory pathway has been noted for its enzymatic inefficiency Due to enhanced RuBP carboxylation and decreased rubisco oxygenation stemming from the increased concentration of |CO2 in the bundle sheath, rates of photorespiration are decreased in |C4 plants.
Измерение
RuBP можно измерить изотопным методом, посредством превращения ^{14}CO2 и RuBP в глицеральдегид-3-фосфат. Затем G3P можно определить с помощью энзиматического оптического анализа. Учитывая высокую концентрацию RuBP в биологических образцах, дополнительной сложностью является разграничение отдельных пулов субстрата, например, RuBP внутри хлоропласта и вне его. Один из способов решения этой задачи – использование вычитательного анализа, заключающегося в измерении общего количества RuBP в системе, удалении одного из пулов (например, центрифугированием), повторном измерении общего количества RuBP и определении концентрации в удаленном пуле по разнице.
RuBP can be measured isotopically via the conversion of |^{14}CO2 and RuBP into glyceraldehyde 3 phosphate. G3P can then be measured using an enzymatic optical assay. Given the abundance of RuBP in biological samples, an added difficulty is distinguishing particular reservoirs of the substrate, such as the RuBP internal to a chloroplast vs external. One approach to resolving this is by subtractive inference, or measuring the total RuBP of a system, removing a reservoir (e. g. by centrifugation), re measuring the total RuBP, and using the difference to infer the concentration in the given repository.