Введение

Перлекан (PLC), также известный как основной белок гепарансульфат протеогликана (HSPG) или гепарансульфат протеогликан 2 (HSPG2), — это белок, кодируемый геном HSPG2 у человека. Ген HSPG2 кодирует белок, состоящий из 4391 аминокислоты, с молекулярной массой 468 829. Это один из самых крупных известных белков. Название «перлекан» происходит от его внешнего вида в виде «жемчужной нити» на изображениях, полученных методом ротационной тени. Перлекан был впервые выделен из линии опухолевых клеток и показано, что он присутствует во всех нативных базальных мембранах. Перлекан представляет собой крупный мультидоменный белок (пять доменов, обозначенных I–V). Перлекан синтезируется как сосудистыми эндотелиальными, так и гладкомышечными клетками и откладывается во внеклеточном матриксе парагозоанов. Перлекан высоко консервативен у различных видов, и имеющиеся данные указывают на то, что он эволюционировал от древних предков путем дупликации генов и перетасовки экзонов. Хотя цепи HS не требуются для правильной укладки и секреции белка, отсутствие HS или снижение сульфатации может снизить способность перлекана взаимодействовать с белками матрицы. Удаление цепей HS может повлиять на организацию матрицы и функцию эндотелиального барьера. Домен II состоит из четырех повторов, гомологичных лигандосвязывающей части рецептора ЛПНП, с шестью консервативными остатками цистеина и пентапептидом DGSDE, который опосредует связывание лигандов рецептором ЛПНП. Домен III имеет гомологию с доменами IVa и IVb ламинина. Домен IV состоит из серии IG-модулей. Структура только 3-го иммуноглобулиноподобного (IG) повтора в домене IV показана на рисунке с надписью «HSPG2». C-концевой домен V, гомологичный домену G длинного плеча ламинина, отвечает за самосборку и может быть важен для формирования базальной мембраны in vivo. Домен V также содержит участки присоединения цепей HS/CS. Таким образом, основной белок перлекана и цепи HS могут модулировать сборку матрицы, пролиферацию клеток, связывание липопротеинов и клеточную адгезию.

Функция

Перлекан является ключевым компонентом внеклеточного матрикса хряща и взаимодействует с FGF 18 через домен III его основного белка, опосредуя их действие на рецепторы FGF. Перлекан, вероятно, играет критическую роль в секвестрации и/или доставке FGF 2 и FGF 18 во время эндохондрального окостенения. Перлекан также является ключевым компонентом сосудистого внеклеточного матрикса, где он взаимодействует с различными другими компонентами матрикса и способствует поддержанию функции эндотелиального барьера. Перлекан является мощным ингибитором пролиферации клеток гладкой мускулатуры и, таким образом, предположительно помогает поддерживать сосудистый гомеостаз. Перлекан также может усиливать активность факторов роста (например, FGF2) и, следовательно, стимулировать рост и регенерацию эндотелия.

Модификация цепей гликозаминогликанов

Модификации гепарансульфатных цепей в C- и N-концевых доменах являются наиболее изученными различиями в секреторном пути перлекана. Хондроитинсульфат может замещать гепарансульфат, а степень сульфатации или сахаросостав цепей может изменяться. Потеря ферментов, участвующих в пути синтеза гепарансульфата, приводит к ряду заболеваний. Дифференциальная модификация гепарансульфатных цепей может происходить под воздействием различных регуляторных сигналов. Перлекан в пластинке роста длинных костей мыши демонстрирует изменения гликозилирования в процессе дифференцировки хондроцитов от зоны покоя к зоне пролиферации. Хотя изначально считалось, что цепи гликозаминогликанов (GAG) перлекана состоят исключительно из гепарансульфата, это согласуется с предыдущими данными, показывающими, что к бычьему перлекану, продуцируемому хондроцитами, присоединены цепи GAG хондроитинсульфата, а рекомбинантный белок человеческого домена I при экспрессии в клетках яичника китайского хомяка гликозилируется как гепарансульфатными, так и хондроитинсульфатными цепями. Предпочтительное присоединение гепарансульфатных или хондроитинсульфатных цепей к доменам I и V может влиять на дифференцировку мезенхимальных тканей в хрящ, кость или другие ткани, однако регуляторные механизмы переключения от присоединения гепарансульфата к хондроитинсульфату изучены недостаточно. При изучении влияния состава протеогликанов на пермселективность при нефрите было отмечено, что обработка пуромицином человеческих гломерулярных эндотелиальных клеток (HGEC) изменяет уровень сульфатации цепей GAG в протеогликанах, таких как перлекан, что, в свою очередь, приводит к снижению стабильности этих цепей. Уровень мРНК основных белков протеогликанов не изменяется, следовательно, снижение количества цепей GAG обусловлено другим фактором, который в данном случае оказался снижением экспрессии ферментов сульфаттрансфераз, играющих ключевую роль в биосинтезе GAG. Похоже, что существует определенное пересечение в заболеваниях, возникающих в результате потери экспрессии гепарансульфатных протеогликанов и потери ферментов, участвующих в биосинтезе гепарансульфата.

Деградация

Клетки могут модифицировать свою внеклеточную матрицу и базальные мембраны в ответ на сигналы или стресс. Специфические протеазы действуют на белки во внеклеточном окружении, когда у клеток появляется необходимость в перемещении или изменении своего окружения. Катепсин S – это цистеиновая протеаза, которая умеренно ослабляет связывание FGF-положительных клеток с перлекан-положительным субстратом. Катепсин S является потенциальной протеазой, воздействующей на основной белок перлекана в базальной мембране или строме. Гепарансульфатные цепи перлекана связывают факторы роста в внеклеточном матриксе и служат ко-лигандами или усилителями лигандов при связывании с рецепторами. Другое исследование показало, что высвобождение основного FGF, связанного с гепарансульфатом, в культуре можно достичь обработкой стромелизином, гепаритиназой I, коллагеназой крысы и плазмином, а эти участки протеолиза изображены на рисунке 1. Это было предложено как неполный список протеаз, способных опосредовать высвобождение факторов роста из гепарансульфатных цепей перлекана. Хотя Уайтлок и соавторы предположили, что в основном белке перлекана существуют консенсус-последовательности для расщепления тромбином, они также полагают, что любая активация перлекана тромбином на самом деле происходит из-за расщепления других компонентов внеклеточного матрикса. В данной статье утверждается, что гепараназа отвечает за расщепление гепарансульфатных цепей перлекана в матриксе. Это высвобождает факторы роста, связанные с гепарансульфатом, в частности FGF 10. Добавление гепараназы к клеточной культуре эпителия в базальной мембране привело к увеличению пролиферации эпителиальных клеток из-за высвобождения FGF 10. В модели роста экспланта in vitro с использованием эпителия роговицы экспрессия металлопротеиназы 2 (MMP2) коррелирует с начальной деградацией исходной базальной мембраны. Реформация базальной мембраны в культуре зависела от первоначальной индукции, за которой следовало подавление экспрессии MMP9, в отличие от постоянной экспрессии MMP2. Это не является доказательством того, что MMP2 и MMP9 непосредственно расщепляют белок перлекана in vivo, но показывает, что эти белки явно модулируют какой-то фактор созревания базальной мембраны. Другое семейство металлопротеаз, семейство белков костного морфогенеза 1/Tolloid-подобных, высвобождает C-концевой эндорепеллиновый домен основного белка перлекана. Ламининоподобный глобулярный домен содержит активный мотив эндорепеллина и не может быть расщеплен клетками, экспрессирующими мутантные и неактивные формы белков BMP1. Кроме того, критический остаток, необходимый для этого расщепления, был локализован в Asp4197. Этот протеолитический процесс может иметь значение при заболеваниях, поскольку соответствующий фрагмент был обнаружен в моче пациентов, страдающих терминальной стадией почечной недостаточности, и в амниотической жидкости беременных женщин с преждевременным разрывом плодных оболочек.

Выражение во время развития

Время экспрессии генов в ходе развития варьируется в зависимости от ткани. Базальные мембраны часто являются определяющим фактором, разделяющим эпителий от стромы и соединительной ткани. Перлекан играет особенно важную роль в развитии сердечно-сосудистой, нервной и хрящевой систем. Развитие бластоцисты до имплантации представляет собой контролируемый каскад регуляции генов и межклеточной сигнализации. Внеклеточный перлекан обнаруживается на стадии бластоцисты эмбрионального развития мыши, с выраженным повышением экспрессии в момент, когда эмбрион достигает "компетентности к прикреплению". Этот результат был подтвержден как на уровне мРНК, так и на уровне белка, что было показано с помощью RT-ПЦР и иммуногистохимии. Позднее эмбриональное развитие регулируется столь же точно, как и развитие до имплантации, но более сложно из-за дифференцировки всех тканей. Первое исследование экспрессии перлекана в ходе эмбрионального развития показало, что белок впервые экспрессируется в процессе развития сердечно-сосудистой системы, а затем коррелирует с созреванием большинства тканей организма, то есть с отделением эпителиальных слоев от эндотелия и стромы базальными мембранами. Опять же, это повышение регуляции в ходе развития сердечно-сосудистой системы совпадает с ролью C-концевого домена перлекана в качестве эндорепеллина. Пространственно-временная специфичность транс-активации гена перлекана в ходе развития имеет ключевое значение для созревания базальных мембран и, следовательно, для полного разделения эпителия от эндотелия и стромы. Тщательное исследование экспрессии перлекана в ходе развития эмбриона курицы показало, что перлекан присутствует на стадии морулы и на протяжении всего последующего развития, хотя экспрессия может быть временной и точно синхронизирована в определенных предшественниках тканей. У эмбрионов крысы было показано, что экспрессия перлекана увеличивается в клетках гладкой мускулатуры сосудов (КГМС) после 19-го дня внутриутробного развития. Это прекрасно коррелирует с прекращением пролиферации КГМС на 18-м дне и изменением их фенотипа. Теория, предложенная в этом исследовании, заключается в том, что перлекан играет антипролиферативную роль для КГМС после достижения определенной точки развития, подобно экспрессии перлекана, зависящей от конфлюентности, в культуре клеток. Эти результаты были подтверждены аналогичными результатами исследований легочной артерии и эпителия легких крыс. В этих тканях также было обнаружено, что продукция перлекана начинается после прекращения деления клеток, примерно на 19-й день внутриутробного развития. Развитие нервной системы и рост аксонов точно направляются сигналами из молекул внеклеточного матрикса. Рост обонятельных нейритов в ходе развития мыши, по крайней мере частично, направляется внеклеточным матриксом, синтезируемым обонятельными эпителиальными клетками (ОЭК). Перлекан и ламинин 1, по-видимому, играют важную роль в этом пути наведения, хотя индукция перлекана происходит немного позже, чем индукция ламинина 1. Эти данные подтверждаются более ранними данными, показывающими, что ОЭК экспрессируют FGF 1 в ходе развития обоняния, и что перлекан может стимулировать рост обонятельных сенсорных нейритов в культуре в присутствии FGF 1. В предыдущем исследовании также было показано, что перлекан обладает нервно-адгезивными свойствами, что позволяет предположить, что он может играть привлекательную роль в сочетании с ламинином, а не отталкивающую. Развитие хрящей и костей оказалось зависимым от экспрессии перлекана. Учитывая данные о том, что мыши с дефицитом гена *pln* не могут поддерживать стабильный хрящ, очевидно, что перлекан необходим для созревания и стабильности хрящевой ткани. Это подтверждается исследованием, показывающим, что подавление экспрессии перлекана ингибирует заключительные стадии хондрогенной дифференцировки в фибробластах C3H10T1/2 в культуре. Развитие костной ткани, то есть минерализация хрящевой ткани, коррелирует с потерей перлекана и гепарансульфата в хондрооссальном соединении (ХОС). Для понимания того, как гепарансульфат и перлекан направляют мезенхимальные стволовые клетки по остеогенному пути, мезенхимальные стволовые клетки человека обрабатывались гепараназой и хондроитиназой в культуре. Это привело к увеличению минерализации и экспрессии маркеров остеоцитов, что подтверждает данные о том, что потеря гепарансульфата в ХОС является ключевым фактором остеогенеза. Считается, что движущей силой активации остеогенеза гепараназой и хондроитиназой является высвобождение костного морфогенетического белка, связанного с цепями гепарансульфата.

Животные модели

Устранение перлекана в эмбрионах рыб-зебр было достигнуто с помощью морфолиносов, нацеленных на транскрипт перлекана. Морфолины использовались для блокирования трансляции мРНК перлекана в эмбрионах рыб-зебр в рамках исследования функции перлекана в скелетном и сосудистом развитии. Морфолино нацелен на 5'-нетранслируемую область мРНК перлекана, тем самым блокируя трансляцию. Потеря белка перлекана у этих рыб привела к серьезным миопатиям и проблемам с кровообращением. Как показано в более позднем исследовании той же лаборатории, этот фенотип можно было скорректировать путем добавления экзогенного VEGF A. Важность перлекана для развития млекопитающих демонстрируют эксперименты по нокауту гена перлекана. Другие особи умирают вскоре после рождения с серьезными дефектами, такими как аномальное формирование базальной мембраны, дефектное развитие головных и длинных костей, а также ахондроплазия. Стратегия нокаута, использованная для одного из нокаутов по перлекану, заключалась в инактивации рецептора факторов роста фибробластов. В другой нокаутной модели мыши ген перлекана был мутирован посредством гомологической рекомбинации эндогенного гена перлекана с конструкцией, содержащей 2 и 5 кб гомологичных фрагментов, окружающих удаленный экзон 3, поскольку, помимо единственного сайта присоединения гепарансульфата, сохранившегося в домене I, отсутствует сайт присоединения в домене V. Однако, в отличие от мышей с полным нокаутом перлекана, жизнеспособность и рост длинных костей у мышей с нокаутом экзона 3 были нормальными. Это указывает на то, что у мышей с нокаутом экзона 3 оставшиеся сайты присоединения гепарансульфата в доменах I и V доступны для связывания FGF 2. Мыши с нокаутом экзона 3 также показали снижение способности к заживлению ран и ангиогенезу при повреждении эпидермиса или добавлении FGF 2 в роговицу. В исследовании повреждения эпидермиса у мышей с нокаутом экзона 3 и контрольных мышей была создана рана, охватывающая всю толщину эпидермиса, и у мышей с нокаутом ангиогенез и признаки заживления ран развивались медленнее, возможно, из-за снижения секвестрации фактора роста отрицательно заряженным гепарансульфатом перлекана. Аналогичный результат был получен в анализе микрокарманов роговицы, где FGF 2 имплантируется в роговицу мышей, и в нормальных мышах индуцируется ангиогенез. У мышей с нокаутом этот ангиогенный эффект был ослаблен, хотя и не полностью. Для создания трансгенной мыши с перлеканом был использован полноразмерный конструкт перлекана под контролем промотора коллагена II типа. Промотор коллагена II типа обеспечивал экспрессию перлекана только во внеклеточном матриксе, продуцируемом хондроцитами, но не в базальных мембранах, продуцируемых эндотелиальными, эпителиальными или мышечными клетками. Трансген перлекана у мыши с полным нокаутом перлекана устранил летальность и восстановил нормальный рост длинных костей. Это говорит о том, что перлекан играет важную роль в развитии хряща. Однако у трансгенных мышей с перлеканом наблюдалась гипертрофия мышц, что указывает на роль перлекана в развитии мышц, а также в росте хрящевой пластинки, опосредованном ростом длинных костей. Исследования на мышах с нокаутом гена и при заболеваниях человека также выявили важную in vivo роль перлекана в развитии хряща и активности нейромышечного синапса.

Сигнальные пути и их влияние на выражение

Сигнальные пути функционируют, повышая или понижая уровень транскрипции генов, что, в свою очередь, приводит к изменению профиля экспрессии генов в клетках. Конечный эффект сигнальных путей реализуется на промоторе генов, который может включать элементы, расположенные выше или ниже точки начала транскрипции, некоторые из которых могут находиться даже внутри транскрибируемого гена. На экспрессию перлекана могут влиять различные сигнальные молекулы, в том числе семейства трансформирующего фактора роста бета (TGF β), интерлейкинов (IL) и фактора роста эндотелия сосудов (VEGF).

Транскрипционная активация

Вверх по течению 2,5 килобазы в области промотора перлекана изучались с помощью CAT-активации в клеточных линиях различного гистологического происхождения. Это исследование показало наличие в промоторе элемента, чувствительного к TGF β, расположенного всего в 285 парах оснований выше участка начала транскрипции. Этот результат был подтвержден в таких тканях, как клетки карциномы толстой кишки человека и эпителий матки мыши, путем добавления цитокина в среду клеточной культуры in vitro. Исследования in vitro передачи сигналов TGF β1 и его влияния на экспрессию перлекана могут давать различные результаты в разных типах клеток. В культивируемых клетках гладкой мускулатуры коронарных артерий сигнализация TGF β1 не оказывала влияния на экспрессию перлекана, хотя и усиливала регуляцию других компонентов внеклеточного матрикса. Демонстрация динамической регуляции перлекана и его контроля посредством внеклеточных сигнальных путей in vivo имеет решающее значение для понимания роли белка в развитии. С этой целью была создана линия трансгенных мышей, экспрессирующая свиной TGF β1 под контролем линзоспецифичного промотора αA-кристаллина. Обработка фибробластов десен человека в культуре IL-4 привела к увеличению продукции различных гепарансульфатных протеогликанов, включая перлекан. Обработка фибробластов легких человека in vitro IL-1β не привела к значительному увеличению продукции перлекана. Другой сигнальный путь, способствующий увеличению транскрипции PLN, – это путь VEGF. Обработка VEGF165 микрососудистых эндотелиальных клеток мозга человека в культуре стимулирует увеличение транскрипции PLN. Эта молекула является лигандом рецептора VEGF 2 (VGFR2), и, по-видимому, этот ответ на VEGF165 специфичен для повышения регуляции перлекана, что приводит к положительной обратной связи, включающей фактор роста фибробластов (FGF), рецептор FGF (FGFR) и VEGFR2 в ответ на повреждение эндотелия. Это микрососудисто-специфическая регуляция VEGF165 позволяет предположить, что антикоагулянтная функция перлекана является частью процесса контроля повреждения эндотелия мозга. Сигнализация протеинкиназы C предположительно отвечает за повышение регуляции транскрипции и трансляции определенных протеогликанов, включая перлекан. Когда эндоцитарный путь клеток HeLa ингибируется сверхэкспрессией мутантного динамина, протеинкиназа C активируется, и впоследствии увеличивается уровень мРНК и белка перлекана. Напротив, обычное подавление экспрессии перлекана в ответ на гипергликемию теряется у мышей с дефицитом PKC α.

Транскрипционная понижающая регуляция

Сигнализация интерфероном γ опосредует транскрипционную репрессию гена перлекана. Это было впервые показано в клеточных линиях рака толстой кишки, а затем и в клеточных линиях тканей другого происхождения, но в каждом случае для реализации сигнала требовался неповрежденный транскрипционный фактор STAT1. Это заставило исследователей предположить, что транскрипционный фактор STAT1 взаимодействует с промотором Pln в дистальной области, расположенной на расстоянии 660 пар оснований выше точки начала транскрипции. Вероятно, потеря экспрессии перлекана обусловлена снижением транскрипции посредством активности транскрипционного фактора STAT1, как было показано ранее. Эти результаты, полученные in vitro, не обязательно отражают нормальные физиологические концентрации интерферона γ, и цитокин обычно не экспрессируется повсеместно, а лишь в очень специфические моменты развития. Важно отметить, что экспрессия перлекана может быть снижена при обработке экзогенным цитокином, таким как интерферон γ, и физиологически аномальное повышение экспрессии цитокина могло бы препятствовать имплантации.

Стрессоры клеток и их влияние на экспрессию

Механические и химические воздействия могут повреждать базальные мембраны или клетки, которые они поддерживают. Это может повлиять на профиль экспрессии генов клеток, особенно в их внеклеточном матриксе, который часто обеспечивает физическую поддержку и химический барьер для клеток. Гипоксия, воспаление, механические и химические воздействия изучались в связи с экспрессией перлекана. Гипоксия – это состояние, встречающееся при заболеваниях и травмах, и часто приводит к снижению пролиферации эндотелиальных клеток. Это, а также роль перлекана как эндорепеллина, послужили причиной изучения природы регуляции экспрессии перлекана эндотелиальными клетками в условиях гипоксии. В условиях гипоксии экспрессия перлекана в микрососудистых эндотелиальных клетках сердца крысы снизилась на шестьдесят один процент по сравнению с нормальным контролем. В данной работе утверждается, что снижение экспрессии перлекана приводит к потере активации FAK и, следовательно, к уменьшению ERK-сигнализации, что ведет к снижению пролиферации клеток. Кажется нелогичным, что эндотелиальные клетки будут пролиферировать медленнее из-за потери перлекана и его эндорепеллинового субъединицы. Возможно, эти эндотелиальные клетки просто снизили транскрипцию многих генов в ответ на гипоксические условия. В другом исследовании гипоксия привела к индукции генов, связанных с апоптозом и гибелью клеток, но подавление генов не ограничивалось белками, связанными с определенным сигнальным путем. При воздействии на клетки эпителия кишечника T84 гипоксических условий в течение 24 часов наблюдается значительное увеличение продукции перлекан-мРНК и белка. Это связывают с тем, что многие гены, экспрессия которых повышается в ответ на гипоксию, содержат элемент ответа на цАМФ (CRE) в своем промоторе, как и pln. Эта разница между эндотелиальными клетками, исследованными в исследовании 2007 года, и эпителиальными клетками, изученными в этих экспериментах, указывает на то, насколько разнообразны механизмы регуляции перлекана в различных типах клеток. Развитие бета-амилоидных бляшек в мозге связано с началом болезни Альцгеймера. Эти бляшки индуцируют постоянное состояние воспаления в областях накопления, что приводит к экспрессии определенных генов, связанных с воспалением, некоторые из которых поддерживают воспаление в контексте мозга. Как упоминалось ранее, для изучения влияния воспаления мозга на уровни экспрессии перлекана, в мозге мышей создавались проколы иглой, а после воспаления и различных периодов восстановления уровни мРНК и белка оценивались с помощью in situ гибридизации и иммуноокрашивания. Уровни перлекана были повышены в гиппокампе, но не в стриатуме в период заживления, наряду с экспрессией IL-1α. На уровне организма механическое напряжение оказывает глубокое влияние на целостность внеклеточного матрикса и, вероятно, вызывает индукцию ряда генов ЭКМ для восстановления и ремоделирования ЭКМ в строме ткани и базальных мембранах. В одном исследовании изучались in vitro эффекты давления на глобальную транскрипцию генов с использованием микромассива и системы растяжения клеток, предназначенной для имитации внутриглазного давления в ламини крибозы (соединительной ткани) головки зрительного нерва. Было обнаружено, что перлекан и несколько других протеогликанов повышались в ответ на растягивающий стимул. Также индуцировались TGF β2 и VEGF, что, возможно, способствовало повышению регуляции транскрипта и белка перлекана. Показано, что аутокринная сигнализация TGF β является компенсаторным результатом механического напряжения in vitro в эндотелиальных клетках. Используя аналогичный механизм растяжения клеток для имитации артериального давления, это исследование показало, что продукция перлекана увеличивается в ответ на механическое напряжение. Это зависит от аутокринной сигнализации TGF β в положительной обратной связи с p38 и ERK. Это увеличение эндотелиальных клеток в производстве ингибиторов роста гладкомышечных клеток сосудов (т.е. гепарина) обращается в гладкомышечных клетках сосудов, где механическое напряжение вызывает пролиферацию. Деформация клеток гладкомышечных клеток сосудов в культуре приводит к повышению регуляции перлекана, со значительным увеличением сульфатации гепаран-сульфатных цепей. Это не противоречит данным, показывающим, что экспрессия перлекана остается постоянной после e19 в гладкомышечных клетках сосудов крысы, что предполагает, что перлекан играет антипролиферативную роль для гладкомышечных клеток сосудов. В этом случае, похоже, что сигнальная функция молекулы является основным фактором повышения регуляции, особенно из-за увеличения сульфатации гепаран-сульфатных цепей. Химическое повреждение органов может влиять не только на генетическую и механическую целостность клеток, но и на внеклеточный матрикс ткани. Для изучения влияния химического повреждения на клетки печени крысам Wistar вводили тетрахлорметан в течение 48 часов перед убоем. До обработки CCl4 окрашивание перлеканом ограничивалось желчными протоками и синусоидальными сосудами печени. После обработки окрашивание перлеканом было интенсивным в областях некроза. Это могло быть связано с увеличением капилляризации печени в попытке регенерировать поврежденную ткань. Аналогичный результат был показан при обработке мышей ацетаминофеном, где перлекан и другие компоненты матрикса были сильно экспрессированы в некротических очагах печени.

Экспрессия в клеточной культуре

Одним из весомых аргументов против достоверности результатов клеточных культур in vitro, полученных на двухмерных пластиковых пластинах, является то, что среда культивирования неточно отражает микроокружение клеток в организме. Решение этой проблемы заключается в разработке трехмерных клеточных культур с использованием широкого спектра субстратов в качестве каркасов или сред для клеток. В таких условиях экспрессия генов внеклеточного матрикса (ВКМ) может более точно соответствовать профилю экспрессии in vivo. Трехмерные каркасы, представляющие собой структуры, на которых растут культивируемые клетки, могут состоять из других клеток, то есть кокультур, синтетических полимеров, имитирующих естественную среду клеток, или очищенного ВКМ, такого как матригель, а также любых комбинаций этих трех компонентов. Одна из таких систем была разработана для изучения развития кожи и формирования базальной мембраны между кератиноцитами и стромой. Эта система используется для изучения развития основной мембраны между фибробластами в строме (в данном случае фибробластами в геле коллагена I типа) и кератиноцитами, выращенными на поверхности геля. Экспрессия перлекана и, следовательно, созревание основной мембраны в этой системе зависят от нидоген-опосредованного сшивания коллагена IV и гамма-1 цепи ламинина. Этот эффект также привел к отсутствию гемидесмосом в развивающейся ткани. Другая система, использующая дезорганизованный гидратированный гель коллагена I, была использована для демонстрации того, что первичные фибробласты роговицы человека в конечном итоге проникают в гель и создают матрицу, состоящую из коллагена I типа и перлекана, а также нескольких других сульфатированных матричных гликопротеинов. Это имитирует программу развития фибробластов роговицы in vivo и их реакцию на повреждение. Одной из долгосрочных целей создания трехмерных клеточных культур является разработка тканей, которые можно использовать для замены поврежденных органов и тканей у пациентов с различными заболеваниями. В тканеинженерных клапанах сердца, созданных путем засевания миофибробластов на коллаген I типа с последующим добавлением эндотелиальных клеток, была подтверждена экспрессия гепарансульфата протеогликана, однако в этих тканях не проводилось различий между синдеканом и перлеканом. Еще одной процедурой, которая может стать возможной благодаря тканевой инженерии, является кератоэпителиопластика. Для обеспечения жизнеспособности трансплантированной ткани необходима предварительно сформированная основная мембрана. Коллагеновые гели способствуют формированию полной основной мембраны эпителиальными клетками роговицы в культуре. Перлекан также перспективен в качестве каркаса для культивирования клеток. Клетки протоков и ацинусов слюнной железы человека были успешно выращены на биоактивном пептиде, содержащем последовательность, повторяющуюся в домене IV белка перлекана. Эти клетки воспроизводят ациноподобные структуры, аналогичные тем, что встречаются в нативной железе, а также плотные контакты и полные основные мембраны в культуре.

Рак

В то время как подавление перлекана вызывает существенное ингибирование роста опухоли и неоваскуляризации у мышей с нокаутом по гену перлекана, напротив, при введении клеток с нокаутом по гену перлекана в мышей с дефицитом иммунитета наблюдается усиленный рост опухоли по сравнению с контрольной группой. Прогрессирование рака и патогенез тесно связаны с составом внеклеточного матрикса, и роль перлекана и других молекул внеклеточного матрикса в раке изучается во многих лабораториях. Поскольку базальная мембрана является первым препятствием на пути экстравазации раковых клеток, функции перлекана в этом процессе многообразны. Одной из модельных систем, используемых для изучения экспрессии перлекана в клеточных линиях карциномы, является система клеточных линий метастатической прогрессии меланомы MeWo/70W. Клетки MeWo, как правило, менее инвазивны, чем их клональный вариант – клеточная линия 70W. В одной лаборатории изучали экспрессию перлекана в 27 инвазивных меланомах, и в 26 из 27 образцов было обнаружено значительное увеличение уровня мРНК перлекана по сравнению с нормальной тканью тех же пациентов. Затем они использовали клеточные линии MeWo и 70W для изучения изменений экспрессии перлекана при обработке нейротрофинами, которые могут стимулировать инвазию клеток через матригель in vitro. Более инвазивные клетки 70W начали экспрессировать мРНК перлекана через десять минут после стимуляции нейротрофинами, в то время как клетки MeWo не производили мРНК pln независимо от обработки. В этом исследовании было особо отмечено, что повышение регуляции перлекана происходило даже раньше, чем повышение уровня гепараназы – важного белка, участвующего в процессе экстравазации. При раке яичников, как и при других видах рака, экспрессия перлекана изменяется на разных стадиях прогрессирования заболевания. Окраска на перлекан теряется в базальной мембране яичников, поврежденной инвазивной аденокарциномой, в отличие от окраски на перлекан в базальных мембранах нормальных яичников и яичников с доброкачественными опухолями, где базальная мембрана однородна и по составу очень похожа на базальные мембраны других нормальных тканей. Это согласуется с другими результатами, показывающими потерю перлекана в базальных мембранах, пораженных инвазивным раком шейки матки, распространяющимся в тазовые лимфатические узлы, что неудивительно, учитывая корреляцию повышенных уровней экспрессии мРНК гепараназы с инвазией аналогичной карциномы шейки матки. Напротив, образование опухоли бессмертной линией эпителиальных клеток мыши RT101 при введении в крыс зависело от экспрессии перлекана клетками мыши, а не от наличия эндогенного перлекана у крыс. Клетки RT101 с подавленной экспрессией перлекана с помощью антисмысловых олигонуклеотидов не показали образования опухоли в этой системе, однако клетки, экспрессирующие антисмысловый перлекан и рекомбинантную конструкцию, кодирующую домены I, II и III мышиного перлекана, действительно показали образование опухоли. Таким образом, в этой системе экспрессия перлекана в опухолевых клетках, по-видимому, необходима для агрегации опухоли. Дальнейшие исследования модификации цепей GAG или основного белка инвазивными опухолевыми клетками по сравнению с доброкачественными опухолевыми клетками и нормальной тканью были бы полезны для лучшего понимания роли перлекана в миграции рака. Несколько лабораторий изучали ангиогенез опухолевых клеток in vitro, используя антисмысловые конструкции для подавления экспрессии перлекана. ДНК-комплемент, управляемый сильным промотором, трансфицируется в различные типы клеток для блокирования экспрессии перлекана. Антисмысловые олигонуклеотиды в клетках колоректального рака блокируют трансляцию перлекана, что приводит к снижению роста опухоли и ангиогенеза. Аналогичное снижение пролиферации in vitro наблюдалось в клетках NIH 3T3 и в клеточной линии меланомы человека, экспрессирующей антисмысловую мРНК перлекана. Результаты in vitro с клеточными линиями саркомы Капоши показали, что потеря перлекана в результате трансфекции антисмысловым конструктом привела к снижению пролиферации и миграции этого высокометастатического клеточного типа. Эти результаты контрастируют с результатами in vivo с теми же линиями саркомы Капоши, которые показывают, что снижение уровня перлекана приводит к увеличению ангиогенеза, что облегчает миграцию и, следовательно, связано с увеличением степени злокачественности опухоли. Эти выводы о большем опухолеобразовании in vivo подтверждаются данными, показывающими, что C-концевой участок белка перлекана действует как эндостатинный модуль, известный как эндорепеллин. Была создана рибозимная конструкция для подавления уровня трансляции перлекана. Этот рибозим был направлен на последовательность, кодирующую домен I белка перлекана. Он снижал экспрессию перлекана до 80% в линии рака предстательной железы C42B. В отличие от ранее обсуждавшихся исследований, эти клетки образовывали меньшие опухоли, чем их исходные клетки, при введении в атимичных мышей. Значение этого расхождения в результатах для инвазии неизвестно, хотя верно, что перлекан является частью внеклеточного матрикса в мезенхимальной ткани, и клетки, подвергающиеся эпителиально-мезенхимальному переходу (ЭМП), могут повышать экспрессию перлекана как часть своей программы ЭМП.

Диабет и сердечно-сосудистые заболевания

Уровни перлекана снижаются при многих заболеваниях, например, при диабете, атеросклерозе и артрите. Перлекан играет важную роль в поддержании гломерулярного фильтрационного барьера. Снижение уровня перлекана в гломерулярной основной мембране играет центральную роль в развитии диабетической альбуминурии. Экспрессия перлекана подавляется многими атерогенными стимулами, и поэтому считается, что перлекан играет защитную роль при атеросклерозе. Диабет и атеросклероз часто встречаются совместно. В 80% случаев смерти, связанных с диабетом, наблюдаются те или иные атеросклеротические осложнения, а базальная мембрана эндотелия вовлечена в атерогенный процесс. Синтез гепарансульфата снижается в артериях пациентов с диабетом и в артериях, где развиваются атеросклеротические поражения. Механизм снижения гепарансульфата в этих поражениях долгое время оставался неизвестным. Одна из теорий предполагает, что высокий уровень глюкозы в крови может приводить к снижению присоединения GAG-цепей к перлекану, но не обязательно к изменению пути синтеза GAG-цепей или самого белка-ядра. После обработки эндотелиальных клеток аорты человека средой с высоким содержанием глюкозы, выделяемый перлекан содержал меньше сульфатных включений, сопровождающихся снижением общего включения GAG-цепей. Хотя сигнальный путь, приводящий к такому снижению включения GAG-цепей, не был идентифицирован, предполагается, что потеря 30% общего гликозилирования белка может означать потерю одной из трех HS-цепей перлекана в этой модели гипергликемии, связанной с диабетом. Также отмечается, что аналогичное снижение внеклеточного ГС без изменения окраски для белковых цепей ядра наблюдается в почках пациентов с диабетом и в клетках почек в культуре, обработанных высоким содержанием глюкозы. Атеросклероз является наиболее частой причиной ишемической болезни сердца и других сердечно-сосудистых заболеваний, а значительное скопление белка перлекана является признаком развитых атеросклеротических бляшек. Гладкие мышечные клетки сосудов (ГМКС) являются продуцентами перлекана в этом состоянии, что означает, что значительная часть исследований была направлена на понимание механизмов регуляции экспрессии перлекана. В тесте, оценивающем влияние циркулирующих свободных жирных кислот (симптоматичных для диабета и атерогенеза) на экспрессию перлекана в ГМКС, экспрессия не изменилась по сравнению с контрольными клетками. Это контрастировало с 2-10-кратным увеличением экспрессии других протеогликанов основной мембраны. Тромбин – еще один маркер, связанный с атерогенезом и прокоагуляцией, который избирательно повышает продукцию перлекана, но не других протеогликанов в человеческих ГМКС в культуре. Предполагается, что этот эффект наблюдается только при достижении ГМКС конфлюэнтности, но не до нее. Эта концепция созвучна ранее упомянутым исследованиям, показывающим, что перлекан продуцируется ГМКС только после прекращения их пролиферации в процессе развития. Учитывая значимость экспрессии перлекана при атеросклерозе, существует потенциал для терапии, основанной на модуляции экспрессии перлекана, и исследования могут в конечном итоге быть направлены в этом направлении.